◆Memo

關于NO研究中Photo-controllable NO donor的意義及問題點

雖然一氧化氮是分子量僅有30的氣體分子，但是在生物體內作為信號傳輸物質而發揮作用，因此闡明其生理意義是一項重要的課題。下文闡述了一些與NO研究相關的生理現象。

●　血管舒張（vasodilation）

●　神經傳輸（neurotransmission）

●　血小板黏附（platelet adhesion）

●　炎癥反應（inflammation）

NO的氣體分子是通過生物體內的NO合成酶產生，但在生理條件下極其不穩定，半衰期約為幾秒左右。因此，NO被認為是在生物體內產生后，僅在非常狹小的范圍（<100 μm）內起作用的局部信號傳輸物質，因此，期待能夠闡明NO作為媒介參與的局部信號傳輸的意義。然而，由于NO是不穩定的氣體分子，難以用于實驗中，于是NO donor便被用于驗證NO生理效果。

NO donor是在水溶液中分解，并緩慢釋放NO的化合物群的總稱。不同NO釋放效率以及半衰期各異的化合物被開發成各種產品。然而，使用以前的NO釋放劑，會使實驗溶液全部均一地釋放出NO，導致很難觀察到原來的NO作用于局部的瞬時效果。為了解決該問題，近年來已開發出幾種光反應性的NO donor如“Photo-controllable NO donor"，1） 需要UV光的試劑類，或2） 主要使用金屬絡合物的試劑類，但無論哪種都有難以適用于活細胞實驗的缺點（參照表格）。

名古屋市立大學的中川秀彥教授等人克服了至今的問題，成功開發出不含金屬絡合物，毒性低且能在時間空間上控制NO釋放，并通過可視光控制的Photo-controllable NO donor——NO-Rosa5（Controllable NOdonor）。使用本產品，可以在任意時間以及任意局部控制NO釋放，作為研究NO的新工具而備受期待。

◆參考文獻

◆原理

本試劑將Rosamine色素骨架用作光吸收天線，在吸收黃綠色光（530~590 nm）時，誘導光致電子轉移(PeT: Photoinduced electron Transfer)，釋放出NO。

◆特點

●　通過黃綠色光（530~590 nm；最大吸收λmax～560 nm）引發NO釋放。

●　非光照射時，NO釋放量被抑制在極其微小的程度^*1 。

●　推薦使用濃度10 μM，未發現細胞毒性。

●　已驗證了在培養細胞系，ex vivo主動脈血管舒張實驗中的生物活性。

●　已證實顯微鏡的543 nm射線（He- Ne射線）以及氙燈可作為光源使用。

*1 請務必注意實驗中的環境光線。

◆操作方法概要

※以下實驗步驟僅供參考。請根據具體實驗目的進行探討。

1.　制備含有Controllable NOdonor的培養基

2.　去除培養基

3.　更換含有Controllable NOdonor的培養基^*2

4.　培養30分鐘以上

5.　在任意時間、部位進行光照，然后進行各種成像^*3 或生化學分析

*2 也可不更換培養基，直接添加Controllable NOdonor。

*3 各種成像中使用熒光物質作為檢測系統時，需要注意熒光物質的選擇。詳見下文中的“實驗指導"。

實驗注意

本產品有可能因實驗環境的光線（室內熒光燈或陽光）分解，釋放出NO。在制備溶液以及進行實驗時盡量保持避光。

◆應用實例

 ■　通過NO電極定量NO釋放活性

作為in vivo NO釋放模型，用黃綠色光（530~590 nm帶通濾波器）照射含10 μM Controllable NOdonor、100 mM HEPES（pH7.3）、0.1% DMSO的溶液，通過NO電極定量釋放的游離NO濃度。連續300秒照射時，最大可觀察到4 μM的NO（左）。照射時間每20秒脈沖一次時，則可觀察到階段性的NO釋放。隨著試劑消耗，NO的釋放量也逐漸減少（右）。

 ■　使用NO檢測試劑實現NO釋放活性可視化

用綠色熒光NO檢測試劑DAF-FM（10 μM）前處理HEK293T細胞30分鐘后，用PBS清洗細胞，在添加Controllable NOdonor的條件下培養30分鐘。使用NO檢測試劑DAF-FM的熒光強度觀察氙氣光源（帶通濾波器 530~590 nm）照射前后細胞內的NO量。由于光照后DAF-FM的熒光強度顯著增強，可以看出通過光照促使NO釋放。

 ■　通過局部的光照使特定部位釋放NO

用熒光NO檢測試劑DAF-FM DA（10 μM）前處理HEK293T細胞30分鐘后，用PBS清洗細胞，在添加Controllable NOdonor的條件下培養60分鐘。使用共聚焦顯微鏡的543 nm射線光照白圈部分（直徑31 μm），通過DAF-FM檢測NO的釋放?？梢源_認僅白圈部分釋放出NO。使用本試劑，可通過光在時間空間上控制NO的釋放。

 ■　ex vivo 血管舒張實驗

將分離的大鼠主動脈切片浸于填滿Krebs緩沖液的Magnus 試管中，并添加抑制內源性NO產生的NO合成酶抑制劑L-NAME（100 μM）。接著，添加去甲xx腺素（10 μM）使血管進入收縮狀態。即使用綠光（530~590 nm）照射3分鐘，也未發現光自身對血管收縮有效果（圖中①）。但添加Controllable NOdonor（10 μM）后照射綠光則可觀察到明顯的血管舒張（圖中②④）。停止光照后，再次發現血管收縮（圖中③⑤）。雖然sGC（soluble guanylyl cyclase）-cGMP路徑參與NO引起的血管舒張，但在該狀態下添加sGC抑制劑ODQ（10 μM）的話，綠光照射也能抑制血管擴張（圖中⑥）。實驗結果可以看出使用Controllable NOdonor通過光照能夠控制血管舒張。

 ■　評價細胞毒性

向HEK293T細胞中分別添加10（推薦濃度）、30、100 μM的Controllable NOdonor并培養48小時后，使用WST-8分析評價細胞存活率。30 μM以下的細胞存活率得以維持，但在高濃度的100 μM中發現了細胞毒性。本試劑推薦使用10 μM。

◆實驗指導

光譜信息

Controllable NOdonor擁有下圖所示的吸收和熒光光譜。530~590 nm的光照可以有效地釋放出NO。另外，由于含有Rosamine骨架，請注意在500~600 nm的光照下激發，會觀察到紅色熒光。

熒光染料選擇指導

由于Controllable NOdonor在500~600 nm光照下會釋放NO，在實驗中同時使用熒光物質（熒光色素，熒光檢測試劑，熒光蛋白等）時，請務必注意以下幾點。建議提前探討Controllable NOdonor的熒光特性是否會影響目的熒光物質的觀察。

（1）避免使用紅色熒光物質

原因如下，在500~600 nm范圍內不推薦使用含有激發波長的紅色熒光物質。

1.　通過激發光的照射，誘導Controllable NOdonor的NO釋放。

2.　觀察到Controllable NOdonor的Rosamine骨架來源的熒光。

（2）可同時使用的熒光物質

以下波長范圍的熒光物質可以與Controllable NOdonor同時使用。

激發波長<500 nm的熒光物質（藍色熒光物質或綠色熒光物質等）

激發波長>600 nm的近紅外熒光物質

※確認NO的釋放推薦使用綠色熒光NO檢測試劑DAF-FM DA

※ 本頁面產品僅供研究用，研究以外不可使用。